实验动物使用许可证管理sop参考一主要操作规程序号名称编号内容摘要:
洁净走廊,备用。 . 饲养操作 工作人员进入饲养间 关门 , 然后巡视房间的所有设施和动物,并做好温湿 度 、 工作日记等记录,如出现问题及时汇报并进行处理。 给饲料 饲料用给食铲给食 ,严禁用手拿 ; 给料量 以下次添料时 ,略有剩余为宜。 落在饲养架或地上的饲料一律扔弃。 第 19 页 共 42 页 题目: SPF 大小鼠饲养标准操作规程 SOP— XXX 第 2 页,共 2 页 给料频率: 2— 3 天 一次。 给水 每周更换二次水 ,一般选在周一、五更换饮水。 给水时 ,要确认不漏水。 笼盒更换 更 换周期视动物的数量而定 ; 一般每周更换笼盒 一 次 ,每星期二、四更换笼盒,每次更换量为总笼盒的一半。 更换笼盒时在操作车上进行 ,顺序是: 由上而下 , 从左到右依次进行。 ,步骤: 把事先灭菌好的笼盒放在操作车上 , 然后把要换的笼盒也放在车上 , 工作人员使用消毒液浸泡过的镊子 (两把镊子轮换使用 )夹住动物尾部放入新笼盒里 , 用原来的笼盖盖上。 在第一次放入换好的笼盒之前 , 用消毒剂将 笼架 内的四壁擦干净,然后才能放入鼠盒。 动物笼盖每半个月更换清洗消毒一次。 所有的工作完成后 ,将换下的 笼 盒从 污物 走廊→ 缓冲间 → 经外 走廊搬 至 洗消间。 清洁消毒 , 按“ 屏障设施卫生与消毒标准操作规程 ”。 ****** 第 20 页 共 42 页 示例 10: 实验动物健康 观察 规程 题目: 实验动物健康观察 规程 SOP— XXX 第 1 页,共 2 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修 订 人: 修订日期: 编写 /修订记录 版本 摘 要 生效日期 编写 /修订 批 准 A/0 1 目的 规范 实验动物 健康观察方法,及时发现异常情况。 2 仪器与材料 开口器、体温表。 3 规程 观察动物的外表与行为。 精神 有无 萎靡不振、敏感性增高、运动失调。 被毛 有无 粗乱、被毛如油污涂布、皮肤有无创伤、丘疹、水泡、溃疡、脱水皱缩。 头部、颈部、背部有无肿块、四肢关节有无肿胀。 尾部有无肿胀、溃疡、坏疽、无毛瘢痕。 鼻孔有无渗出物阻塞、喷嚏、呼吸困难。 眼部有无渗出物、结膜炎。 口部有无流涎、张口困难。 排出粪便的含水量、颜色、排粪次数、粪便数量、粪便中有无未消化谷粒、黏液、血液、寄生虫虫体。 排尿的次数、每次尿量及颜色等。 第 21 页 共 42 页 题目: 实验动物健康观察 规程 SOP— XXX 第 2 页,共 2 页 大、小鼠抓住尾巴拎起时应四肢伸展, 有 无转圈动作。 触诊 检查。 通过触摸背部、臀部、腿部肌肉,判定动物的营养状况。 仔细检查皮肤的弹性,有无缺毛瘢痕和外寄生虫。 检查耳部有中耳炎。 肛门皮肤及被毛有无被稀粪污染。 眼部有无角膜炎、晶状体浑浊、瞳 孔形状变化和色素沉着等。 用开口器打开口腔,观察黏膜有无出血、糜烂、溃疡、假膜、炎症;轻轻压迫喉头与气管能否引起咳嗽;触诊腹腔有无疼痛反射、较大肿块;量体温。 采食和饮水观察。 在大群实验动物中发现患病动物的最好时机就是投放饲料的瞬间,健康动物常踊跃抢食,而患病动物往往独立于一侧,厌食甚至拒食。 饮水时健康动物一般适度饮水,但腹泻动物通常饮水量大增;食欲与饮欲俱增应怀疑是否为糖尿病。 发现拒食动物立即剔除,作进一步的检查。 观察记录。 对动物进行观察检查后,认真填写以下记录表,作出相应评价。 ****** 第 22 页 共 42 页 示例 11: 大 鼠 眼眶采血 标准操作规程 题目: 大鼠眼眶采血标准操作规程 SOP— XXX 第 1 页,共 2 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修 订 人: 修订日期: 编写 /修订记录 版本 摘 要 生效日期 编写 /修订 批 准 A/0 1 目的 本标准描述实验人员进行大鼠眼眶采血的操作规程。 2 规程 按大鼠乙醚麻醉标准操作规程将大鼠浅麻醉。 采用侧眼向上固定大鼠体位,左手拇食指从背部较紧地握住大鼠的颈部(应防止动物窒息)。 取血时,左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使头部静脉血液回流困难,眼球充分外突,眶静脉丛充血。 右手持长颈 (3~ 4cm)硬质毛细玻璃管(内径 ~ ),将采血管与鼠成 45176。 角,在泪腺区域内,用采血管由眼内角在眼睑和眼球之间向喉头方向刺入。 刺入深度约为 4mm~ 5mm,当达到蝶骨感到有阻力时,再稍后退 ~,边退边抽。 然后将采 血管保持水平位,稍加旋转并后退吸引,由于血压的关系,血液即自动流入玻璃管中。 第 23 页 共 42 页 题目: 大鼠眼眶采血标准操作规程 SOP— XXX 第 2 页,共 2 页 得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时拔出采血管。 为防止术后穿刺孔出血,用消毒纱布压迫眼球 30 秒。 体重 200g~ 300g 大鼠每次可采 1ml~ 2ml 血;间隔 3d~ 7d 采血部位大致修复。 ****** 第 24 页 共 42 页 示例 12: 小鼠 尾静脉 注射标准操作规程 题目: 小鼠尾静脉注射标准操作规程 SOP— XXX 第 1 页,共 1 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修 订 人: 修订日期: 编写 /修订记录 版本 摘 要 生效日期 编写 /修订 批 准 A/0 1 目的 本标准描述实验人员进行小鼠尾静脉注射的操作规程。 2 规程 先将动物固定在固定器内或扣在烧杯中,使尾巴外露。 尾部用 45~C~ 5039。 E 的温水浸泡半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化。 然后将尾部向左或向右拧好, 使一侧尾静脉朝上。 左手食指和中指捏住鼠尾上下,使静脉充盈,用无名指从下面托起尾巴.以拇指和小指夹住尾巴的末梢。 右手持注射器 (连 5 号细针头 ),使针头与静脉平行 (小于 30~),从尾下四分之一处 (约距尾尖 2 mill 一 31/ 1111)进针。 刺入后先缓注少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续注入。 一般推进速度为 0. 05ml/秒~ 0. 10ml/秒,一次注射量为 O. 05ml/ lOg体重~ O. 25ml/ lOg 体重。 注射完毕后把尾巴向注射侧弯曲以止血。 3 注意事项 在小鼠尾部有四根血管十分明显:背腹各有一根动脉,两侧各有一根静脉,尾静脉注射应选取两侧的血管。 ****** 第 25 页 共 42 页 示例 13: 兔耳缘静脉注射标准操作规程 题目: 兔耳缘静脉注射标准操作规程 SOP— XXX 第 1 页,共 1 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修 订 人: 修订日期: 编写 /修订记录 版本 摘 要 生效日期 编写 /修订 批 准 A/0 1 目的 本规程描述实验人员进行兔耳缘静脉 注射的标准操作。 2 规程 助手固定好动物。 操作者把注射部位的毛拔去并用酒精棉球涂擦。 用左手食指和中指夹住静脉近心端,拇指绷紧静脉远端,无名指及小指垫在下面,再用右手指轻弹或轻揉兔耳,使静脉充分暴露。 右手持装置 6 号针头的注射器,从静脉远心端刺入血管内。 如推注无阻力、无皮肤隆起发白,即可移动手指固定针头,缓慢注入药液。 拔出针头时要用棉球压迫针眼并持续数分钟,以防出血。 ****** 兔的耳静脉注射 第 26 页 共 42 页 示例 14: 兔乙醚 麻醉标准操作规程 题目: 兔乙醚麻醉标准操作规程 SOP— XXX 第 1 页,共 1 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修 订 人: 修订日期: 编写 /修订记录 版本 摘 要 生效日期 编写 /修订 批 准 A/0 1 目的 本 规程 描述实验人员进行兔乙醚麻醉的 标准操作。 2 规程 将乙醚倒在棉花上,放入麻醉瓶内,然后将动物投入,盖紧瓶塞。 经过 1~ 2 分钟左右 ,从动物后腿依次出现麻痹现象, 而 后失去运动能力,这表明动物已进入麻醉状态。 约隔 4~ 6 分钟可将动物麻醉。 当发现其倾斜后仍不能站立而跌倒,则说明已进入深度麻醉期,立刻取出动物。 此时动物肌肉松弛,四肢紧张性明显降低。 角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可实施手术。 ****** 第 27 页 共 42 页 示例 15: 兔药物 麻醉标准操作规程 题目: 兔药物麻醉标准操作规程 SOP— XXX 第 1 页,共 2 页 制 定 人: 制定日期: 审 核 人: 审核日期: 批 准 人: 批准日期: 生效日期: 颁发日期: 修。实验动物使用许可证管理sop参考一主要操作规程序号名称编号
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