高中生物同步课件：53血红蛋白的提取和分离5人教版选修1

高中生物同步课件：53血红蛋白的提取和分离5人教版选修1内容摘要：

，蛋白质分离不彻底。 ③顶塞的制作： 打孔 → 安装玻璃管。 ④组装： 将上述三者按相应位置组装成一个整体。 ⑤安装其他附属结构。 （ 2）凝胶色谱柱的装填 ① 凝胶的选择： A、材料： 交联葡聚糖凝胶（ G75）。 B、代表意义： “ G” 表示凝胶的交联程度，膨胀程度及分离范围。 75表示凝胶的得水值，即每克凝胶膨胀时吸水。 ②凝胶的前处理： 配置凝胶悬浮液：计算并称取一定量的凝胶浸泡于蒸馏水或洗脱液中充分溶胀后，配成凝胶悬浮液。 ③凝胶色谱柱的装填方法： A、固定：将色谱柱装置固定在支架上。 B、装填：将凝胶悬浮液一次性缓慢倒入色谱柱内，装填时轻轻敲动色谱柱，使凝胶填装均匀。 注意： 凝胶装填时尽量紧密，以降低凝胶颗粒之间的空隙。 装填凝胶柱时不得有气泡存在： 因为气泡会搅乱洗脱液中蛋白质的洗脱次序，降低分离效果。 装配好的凝胶柱 ④ 洗涤平衡： 装填完毕后，立即用缓冲液洗脱瓶，在50cm高的操作压下，用 300ml的 20mmol/l的 磷酸缓冲液（ pH为 ） 充分洗涤平衡 12小时。 注意： 液面不要低于凝胶表面，否则可能有气泡混入，影响液体在柱内的流动与最终生物大分子物质的分离效果。 不能发生洗脱液流干，露出凝胶颗粒的现象。 （ 2）凝胶色谱柱的装填 50cm高 （ 3）样品加入与洗脱 ① 调节缓冲液面： 打开下端出口，使柱内缓冲液缓慢下降到与凝胶面平齐，关闭出口。 ②滴加透析样品： 吸管吸 1ml样品加到色谱柱的顶端，滴加样品时，吸管管口贴着管壁环绕移动加样，同时注意不要破坏凝胶面。 ③样品渗入凝胶床： 加样后打开下端出口，使样品渗入凝胶床内，等样品完全进入凝胶层后，关闭下端出口。 ④洗脱： 小心加入 pH= 的 20mmol/l的磷酸缓冲液到适当高度，连接缓冲液洗脱瓶，打开下端出口进行洗脱。 ⑤收集： 待红色的蛋白质接近色谱柱底端时，用试管收集流出液，每 5ml收集一试管，连续收集。 （在分离过程中，如果红色区带均匀一致的移动，说明色谱柱制作成功） ⑥注意： 正确的加样操作： 不要触及并破坏凝胶面。 贴壁加样。 使吸管管口沿管壁环绕移动。 （ 3）样品加入与洗脱 注意： 正确的加样操作是： 不要触及并破坏凝胶面。 贴壁加样。 使吸管管口沿管壁环绕移动。 开始进行层析 收集得到的纯化后的蛋白 思考下面的问题： 让血红蛋白处在稳定的 pH范围内，维持结构和功能。 在血红蛋白的整个过程中不断用磷酸缓冲液处理的目的是什么。 与其他真核细胞相比，红细胞有什么特点。 这一特点对你进行蛋白质得分离有什么意义。 血红蛋白是有色蛋白，因此在凝胶色谱分离时可以通过观察颜色来判断什么时候应该收集洗脱液。 这使血红蛋白的分离过程非常直观，大大简化了实验操作。 你能描述血红蛋白分离的完整过程吗。 血红蛋白提取和分离的程序可分为四大步，包括： 样品处理、粗分离、纯化和纯度鉴定。 首先通过洗涤红细胞、血红蛋白的释放、离心等操作收集到 血红蛋白溶液 ，即 :样品的处理；再经过透析去除分子量较小的杂质，即样品的粗分离；然后 通过凝胶色谱法 将相对分子质量较大的 杂质蛋白除去 ，即 :样品的纯化；最后经 聚丙烯酰胺凝胶电泳 进行纯度鉴定。 （三） SDS— 聚丙烯酰胺凝胶电泳（选做） ： 鉴定血红蛋白纯度。 ： ：（略） 观察你处理的血液样品离心后 是否分层 （见教科书图 518）， 如果分层不明显，可能是洗涤次数少、未能除去血浆蛋白的原因。 此外，离心速度过高和时间过长，会使白细胞和淋巴细胞一同沉淀，也得不到纯净的红细胞，影响后续血红蛋白的提取纯度。 三、实验结果分析与评价 你是否完成了对血液样品的处理。 你能描述处理后的样品发生了哪些变化吗。 你装填的凝胶色谱柱是否有气泡产生。 你的色谱柱装填得成功吗。 你是如何判断的。 由于凝胶是一种半透明的介质，因此可以在凝胶柱旁放一支与凝胶柱垂直的日光灯，检查凝胶是否装填得均匀。 此外，还可以加入大分子的有色物质， 例如蓝色葡聚糖 — 2020或红色葡聚糖，观察色带移动的情况。 如果色带均匀、狭窄、平整，说明凝胶色谱柱的性能良好。 如果色谱柱出现纹路或是气泡，轻轻敲打柱体以消除气泡，消除不了时要重新装柱。 如果凝胶色谱柱装填得很成功、分离操作也正确的话，能清楚地看到血红蛋白的红色区带均匀、狭窄、平整，随着洗脱液缓慢流出； 如果红色区带歪曲、散乱、变宽，说明分离的效果不好，这与凝胶色谱柱的装填有关。 你能观察到蛋白质的分离过程中红色区带的移动吗。 请描述红色区带的移动情况，并据此判断分离。